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[基础] 14种癌症模型优缺点

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梦幻之城 发表于 2023-5-14 14:03:10 | 显示全部楼层 |阅读模式
作者:药渡
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医药研究,尤其是药物临床前研究需要选择合适模型。但是,所有模型都不完美,又有其特定优势。根据优缺点和研究目的,选择合适的模型至关重要。

小鼠模型
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类型描述优点缺点
自生性肿瘤模型
致癌物引发的小鼠模型暴露于组织选择性致癌损伤的小鼠肿瘤在原生部位出现 可变外显率
疾病发展的完整自然史可供研究不同步
可进行早期预防研究时间线长
充分的免疫活性转移发生率低
从肿瘤发生时研究免疫、其他基质反应与肿瘤共同进化
基因工程小鼠模型(GEMMS)基因工程改造,在靶组织表达癌症驱动基因,导致肿瘤病变的小鼠如上所述,可以指定起始致癌病变和肿瘤起源细胞致癌驱动基因限制了基因组复杂性
移植瘤
小鼠GEM肿瘤衍生同种异体移植物(GDAs)小鼠GEM肿瘤可以产生大量类似于亲本肿瘤的同步肿瘤原位进化难
移植到同系小鼠宿主中完整的免疫系统 高免疫原性(例如病毒抗原)转基因的摄取率低

通常转移性差
小鼠细胞系衍生同种异体移植物(CellDAs)小鼠肿瘤细胞系植入同系小鼠宿主肿瘤快速发展细胞适应可塑
完整的免疫系统肿瘤内异质性低
用于干预研究的同步荷瘤队列 免疫反应不会以现实的方式共同进化


人鼠模型

类型描述优点缺点
人细胞系衍生异种移植物(CellDXs)已建立的人肿瘤细胞系植入免疫缺陷小鼠肿瘤快速发展 用于药物干预研究的同步荷瘤队列在可塑性上经历了广泛的选择
用于药物干预研究的同步荷瘤队列无适应性免疫 常为克隆性和同质性

一般只能获得疾病晚期的模型

种属不同导致配受体对错配
人类患者来源的肿瘤异种移植物 (PDX)将患者肿瘤组织植入免疫缺陷小鼠体内在基因学、转录组学和组织学上与起源肿瘤更相似无适应性和有限的先天免疫力
肿瘤内异质性建模优于CLDXs。一般只能获得疾病晚期的模型
人类基质元件在几代移植中得以维持种属不同导致配受体对错配
进行“联合临床试验”的可能性
人类患者来源的CTC异种移植物(CDX)患者CTC植入免疫缺陷小鼠富集干细胞样肿瘤细胞,转移倾向增加,耐药性增强同上


低等生物模型

类型描述优点缺点
斑马鱼幼鱼和SCID成体鱼人异种移植GEM模型(例如黑色素瘤,T-ALL,横纹肌肉瘤)肿瘤快速发展一些器官,如乳房和肺不存在。幼鱼<9dpf和SCID成鱼在28.5C下养殖,除特殊鱼类外,缺乏先天免疫系统
与人类80%的同源共享疾病突变<9dpf幼鱼和SCID成鱼缺乏先天免疫系统
适合高分辨率成像和药物筛选除特定SCID鱼,需在28.5C下养殖
用于GEM模型的完整免疫系统
易于进行遗传工程操作
鳉鱼年龄相关性肝肾肿瘤自发性肿瘤随着年龄的增长而出现仅观察到自发性肿瘤。迄今为止,尚未开发出癌症的GEM模型。
完全完整的免疫系统。
果蝇GEM 模型(例如,结肠、急性髓细胞白血病、脑、甲状腺、前列腺)易于基因工程无适应性免疫
易于进行高通量药物筛选一些器官不存在
适合高分辨率成像


3D培养物模型

类型描述优点缺点
器官芯片在微型装置上将癌细胞与组织进行共培养(脉管、骨骼、肝脏、肺等器官模拟物)易于进行高通量药物筛查细胞比例由用户确定,可能与体内器官不同
适合高分辨率成像有部分商业化产品,但依旧对技术有一定要求
量身定制的微环境,以模拟器官微环境的物理化学元素。
仿造人类癌症 - 人体免疫系统
成本低
内置的物理力,如流体流动
类器官分离的肿瘤单细胞或碎片形成的3D衍生物,或者肿瘤单细胞和基质细胞共培养在3D支架上增殖而成易于进行高通量药物筛查细胞比例由用户确定
适合高分辨率成像肿瘤形成的异质性
量身定制的微环境,以模拟器官微环境的物理化学元素。
仿造人类癌症 - 人体免疫系统
可进行数周-年的培养
生物反应器在支架或组织工程器官环境下灌注的癌细胞形成3D衍生物易于进行高通量药物筛查细胞比例由用户确定
量身定制的微环境,以模拟器官微环境的物理化学元素。肿瘤形成的异质性
仿造人类癌症 - 人体免疫系统
内置的物理力,如流体流动
进行数周-月的培养
3D水凝胶/支架接种在水凝胶和脱细胞组织中的单个或成簇细胞易于进行高通量药物筛查细胞比例由用户确定
适合高分辨率成像肿瘤形成的异质性
量身定制的微环境,以模拟器官微环境的物理化学元素。
参考资料
Tanner, K., and Gottesman, M.M. (2015). Beyond 3D culture models ofcancer. Sci. Transl. Med. 7, 283ps9Kreso, A., and Dick, J.E. (2014). Evolution of the cancer stem cell model.Cell Stem Cell 14, 275–291.Perez-Guijarro, E., Yang, H.H., Araya, R.E., El Meskini, R., Michael, H.T.,Vodnala, S.K., Marie, K.L., Smith, C., Chin, S., Lam, K.C., et al. (2020).Multimodel preclinical platform predicts clinical response of melanomato immunotherapy. Nat. Med. 26, 781–791.Cogels, M.M., Rouas, R., Ghanem, G.E., Martinive, P., Awada, A., VanGestel, D., and Krayem, M. (2021). Humanized Mice as a Valuable PreClinical Model for Cancer Immunotherapy Research. Front. Oncol. 11,784947.Faugeroux, V., Pailler, E., Oulhen, M., Deas, O., Brulle-Soumare, L., Hervieu, C., Marty, V., Alexandrova, K., Andree, K.C., Stoecklein, N.H., et al.(2020). Genetic characterization of a unique neuroendocrine transdifferentiation prostate circulating tumor cell-derived eXplant model. Nat.Commun. 11, 1884.Patton, E.E., Zon, L.I., and Langenau, D.M. (2021). Zebrafish diseasemodels in drug discovery: from preclinical modelling to clinical trials.Nat. Rev. Drug Discov. 20, 611–628Sontheimer-Phelps, A., Hassell, B.A., and Ingber, D.E. (2019). Modellingcancer in microfluidic human organs-on-chips. Nat. Rev. Cancer 19,65–81.

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